细胞中蛋白质的正确折叠对其发挥正常的生物学功能、维持细胞内环境的稳态具有重要作用。真核生物II型分子伴侣素TRiC由寡聚双环背对背堆叠而成，每个环由8个同源亚基组成。TRiC在ATP驱动下发生动态构象变化，将化学能转化为机械能，进而协助～10％的胞质蛋白正确折叠。其底物包括许多重要的结构性和调节性蛋白，如肌动蛋白actin和微管蛋白tubulin；与肿瘤发生密切相关的蛋白，如肿瘤抑制蛋白VHL和p53，及原致癌蛋白STAT3；以及细胞周期调节蛋白CDC20等。TRiC对维持胞内蛋白质的动态平衡进而调控细胞的生命过程至关重要，其功能的改变或缺失与癌症及神经退行性疾病等密切相关。因此，探索TRiC在ATP驱动下的完整构象变化过程和机制，以及各亚基功能特异性的结构基础，有利于阐明其底物识别及折叠的分子机制，并为揭示TRiC与上述人类疾病之间的关系提供理论基础。
近日，PNAS在线发表了中国科学院分子细胞科学卓越创新中心（生物化学与细胞生物学研究所）国家蛋白质科学中心（上海）丛尧课题组的研究论文“Anensemble of cryo-EM structures of TRiC reveal its conformational landscape andsubunit specificity”。该研究应用冷冻电镜技术结合生化和功能分析，首次捕捉到真核生物分子伴侣素TRiC（又称CCT）逐步关环的完整构象变化空间，揭示了TRiC各亚基在ATP消耗和关环过程中的特异性（specificity）机制，为深入理解TRiC协助其底物正确折叠的机制奠定了理论基础。
丛尧课题组长期致力于TRiC及蛋白酶体等大分子机器的动态结构与功能研究，揭示了TRiC的阶段性ATP结合机制（NSMB, ; EMBO J, ），蛋白酶体的激活机制及其在泛素链诱导下的变构及底物识别机制等（Cell Res, ; Mol Cell, ）。
在此基础上，这项研究通过解析TRiC在不同核苷酸（nucleotide）状态及浓度下的一系列高分辨率冷冻电镜结构，首次揭示了TRiC逐步关环的完整构象变化空间和过程机制。其中双环关闭结构达到原子分辨率水平，阐明了之前未见报道的诸多亚基N末端结构及其参与TRiC双环协同变构的机制。结合生化及功能实验，系统地揭示了在ATP消耗及变构过程中TRiC各亚基的特异性：ATP结合后CCT7亚基首先发生构象变化，CCT4亚基最后结合ATP成为该复合体关环的限速步骤，CCT8亚基始终与ADP结合几乎不参与ATP循环。阐明了各亚基消耗ATP及变构是按特定的时空顺序分阶段进行的，同时发现与I型分子伴侣素不同，TRiC在上述过程中双环表现为正向协同性（Positive Cooperativity），结束了长期以来的争议。
图1（A）按照亚基结合nucleotide的顺序，TRiC的8个亚基可分为四组，且呈镜面对称分布。（B）TRiC复合体的三套变构协同网络（allosteric network），从亚基内（网络I）的变构到环内（网络II）和环间（网络III）的协同变构。（C）TRiC构象变化空间，揭示了从开环的TS1（TRiCState 1）到双环关闭的TS7状态的相对稳定中间态及环闭合过程中的构象变化过程。（D）在nucleotide浓度逐渐升高条件下，TRiC的构象分布由开环（粉色）逐渐向关环（蓝色）转变。
综上所述，该研究首次捕捉到TRiC逐步关环的完整构象变化空间，揭示了TRiC各个亚基在ATP消耗和关环过程中的特异性及其结构机制，有助于进一步理解TRiC各亚基在其复合体组装、底物识别和折叠过程中表现出的功能特异性。同时揭示了TRiC的双环在ATP消耗、辅助伴侣PFD结合和关环过程中表现出正向协同性，这有利于TRiC对其底物的高效折叠，加深了人们对TRiC高度协同性的认识。以上研究有助于我们理解TRiC协助下的蛋白质折叠机制，并为相关疾病的诊疗提供新思路和靶标。
生化与细胞所博士生金明梁为本文第一作者，丛尧研究员为通讯作者。感谢生化与细胞所周金秋究员、周兆才研究员、李典范研究员等的大力支持。该研究得到张江实验室国家蛋白质科学研究（上海）设施冷冻电镜系统，数据库与计算分析系统、核磁系统、小角散射线站与规模化蛋白质制备系统的大力支持。
原文链接：/content/early//09/04/1903976116
